血液粘度檢測分析報告
1 血液粘度計的選擇
重復性：指所測數(shù)值重復性程度。取同一血樣，壓積在40%～45%范圍內(nèi)，按照儀器操作規(guī)程測量10次，在高剪切率200s-1時，血液表觀粘度的變異系數(shù)應小于2%；低剪切率1s-1時，變異系數(shù)應小于5%。血樣用量應根據(jù)儀器的樣品用量而定，并應嚴格控制樣品計量的精度。樣品量的過多或過少都將對測量結果產(chǎn)生影響，同時，標本在吸入時不要產(chǎn)生氣泡。為保證儀器的正常工作和精確性，要做好日常維護和定期保養(yǎng)，并做好保養(yǎng)維護記錄。同時對儀器的準確度、分辨率和重復性應定期標定。
準確度：指所測數(shù)值與真值（給定）符合的程度。測定時建議以國家計量標準油為標準，在剪切率200s-1時測定低粘度油（2～3mPa·s），在剪切率1s-1時，測定高粘度油（15～25mPa·s），一般應測定５次以上，在低粘度值時測定值與真值的相對偏差應小于5%，高粘度值時測定值與真值的相對偏差應小于3%。
分辨率：在給定條件下，測定出同一物質兩種狀態(tài)下的差異。取壓積在40%～50%范圍內(nèi)的正常人全血，以自身血漿調節(jié)壓積的變化。在高剪切率200s-1時，儀器應能分辨出壓積變化2%時的血液表觀粘度的差異，在低剪切率1s-1時，儀器應能分辨出壓積變化1%時的血液表觀粘度的差異。以上測量應各測5次以上，取平均值。
2 樣品采集、血樣防凝
血液樣品的采集應保持一致。采血時病人取坐位，清晨空腹安靜狀態(tài)下，采集肘前靜脈血。采血時應盡量縮短壓脈帶的壓迫時間，針頭刺入血管后立即松開壓脈帶，安靜約5s后開始采血。最好用7號以上的針頭，采血過程中不宜過快。以避免過細的針頭對紅細胞產(chǎn)生一定的剪切力而破壞紅細胞。
血液需經(jīng)抗凝處理后才能用于測量，抗凝劑對血液流變特性的影響不可忽視。最好用肝素或EDTA抗凝。肝素抗凝濃度一般為每毫升全血用20～30國際單位，EDTA為每毫升全血3.4～4.8mmol/L。抗凝劑一般采用固相或液相抗凝劑。如用液相抗凝劑一般放在干燥玻璃管或玻璃瓶中，烘干后使用，烘干溫度一般不超過56℃。采血完畢后，先取下針頭，將血液沿管壁緩緩注入，輕輕搖勻，避免劇烈震動造成溶血。同一批實驗應采用同一批號同種抗凝劑。
3 血樣保存
血樣應隨采隨測。一般采血后20min即可用于測量，并應于采集后2h以內(nèi)完成流變學參數(shù)的測定。如需放置應在室溫下（18～25℃）密封保存，不宜放入冰箱，存放時間以不超過4h為宜，否則將影響血液的生理狀態(tài)和流變特性。存放血在測量前要充分搖勻。以3000～3500轉/min（離心力為1500～2000g） 離心30min，提取上層血漿測量血漿粘度。血漿為牛頓流體。
4 紅細胞比積測量
常用文氏管。此法不但結果準確，且可同時觀察紅細胞沉降率。將血樣加入，讀取完紅細胞沉降率后，以相對離心力2260g，離心30min，讀取紅細胞柱的高度（以紅細胞上層的黑線薄層為準）。紅細胞壓積%=紅細胞柱的高度/全血高度×100，紅細胞壓積管必須清潔干燥，電源、電壓及離心機載重均可影響離心機的轉速，因此應安裝穩(wěn)壓裝置和固定離心機的載重。
5 測量溫度、測量順序
血液粘度的測量應在37±0.5℃下測量。不同溫度的測量結果之間不能比較。外界溫度高時還應考慮液體蒸發(fā)等因素對其流變特性的影響。對于剪切率可調的儀器在測量時應考慮測量順序的影響。測量時應采用一致的測量順序，從低剪切率開始逐漸增加或從高剪切力開始逐漸降低均可。但應注意的是在低剪切率測量時隨著測量時間的增加，血樣中有形成分的沉降對測量結果的影響。兩種測量順序的結果不可互相比較。每次測定時，樣品池都應清洗干燥，血樣及測量系統(tǒng)應保持恒溫。加樣時不能有氣泡產(chǎn)生。
6 測量報告、正常值
檢測報告中應給出高剪切力200s-1、中剪切力50s-1、低剪切力1s-1下的血液表觀粘度值及血漿粘度（單位為mPa·s）、壓積、血沉、紅細胞的聚集性、變形性等指標。直接測量數(shù)據(jù)和經(jīng)公式計算得到的數(shù)據(jù)應區(qū)別列出，同時要注明測定的溫度、檢測日期及操作人員簽名。血液粘度是血液流變特性的主要參數(shù)。正常值具有相對性，沒有普遍適用的正常值。即使采用通用的儀器和標準操作也是如此［1］。各實驗室應根據(jù)生物體的個體差異、地區(qū)差異、儀器差異等原因，建立自己的正常值。正常值應按男女、年齡等合理分組。當測定值與正常值之差（絕對值）大于2倍正常值標準差時，可以認為是血液粘度異常。
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